загрузка...
 
Тема 15 БОЛЕЗНИ ЭМБРИОНОВ
Повернутись до змісту

Тема 15 БОЛЕЗНИ ЭМБРИОНОВ

Цель занятий. Изучить классификацию, диагностику и профилактику болезней эмбрионов сельскохозяйственной птицы при поточной промышленной инкубации.

Материалы и оборудование. Набор инструментов для вскрытия яиц, 4...5 чашек Петри, подставка для яиц, овоскоп, сливные чашки, фильтровальная бумага, вата, полоски миллиметровой бумаги или линейка, кювета, предметные стекла, настольная лампа, пипетки с узким концом для удаления околоплодной жидкости, циркуль, бюксы для взвешивания зародышей, белка, желтка, плодовых оболочек;

муляжи, фотографии, рисунки, диапозитивы по развитию эмбрионов, цветные карандаши;

музейные препараты эмбрионов, зафиксированные в различные дни развития.

Примерный план занятий. Демонстрация цветных диапозитивов, фотографий, фрагментов кинофильмов по биологическому контролю и патматериала (преподаватель вскрывает погибшие эмбрионы и показывает студентам типичные признаки отдельных нарушений в развитии). Особенно демонстративен показ через ко- даскоп, при его отсутствии эмбрионы раскладывают в чашки Петри.

Преподаватель заранее производит на яйцах с живыми зародышами различные отклонения в эмбриогенезе, что исключает субъективную оценку вскрываемого материала. Кроме того, нужно иметь в виду, что многие отклонения в эмбриональном развитии могут иметь сходные патологоанатомические изменения, вызываемые различными причинами: например, открытая черепная полость эмбриона (акрания) — патология, которая может быть обусловлена генетической аномалией, перегревом и наличием токсинов в белке яйца.

Перегрев и недогрев легко воспроизвести на эмбрионах в любой период инкубации. Неправильный рост аллантоиса в первый период инкубации легко получить, если инкубировать яйца в горизонтальном положении в неподвижном состоянии. Для нарушения газообмена достаточно инкубируемые яйца поместить в клей, который закроет поры в скорлупе. При этом нарушается и испарение из яйца. У погибших эмбрионов возникают типичные признаки гематоамниона. Легко воспроизвести при необходимости эшерихиоз, пуллороз, аспергиллез.

Самостоятельная работа студентов: а) прижизненный биологический контроль путем просвечивания на овоскопе яиц (для вскрытия отбирают неразложив- шиеся яйца с погибшими эмбрионами); б) вскрытие отходов инкубации (студентов разделяют на группы по 2...3 человека) с занесением всех нарушений в протокол.

Обсуждение наблюдаемых изменений и мер, направленных на устранение причин, вызвавших патологию. Диагноз считают обоснованным, если при вскрытии обнаруживают типичные изменения для того или иного нарушения не менее чем у 20 % погибших эмбрионов. В одной партии вскрытых эмбрионов могут быть противоположные изменения, которые можно объяснить наличием в инкубаторе различных микроклиматических зон и топографическим расположением яиц.

Подведение итогов занятия.

Задание к следующему занятию.

СОДЕРЖАНИЕ ЗАНЯТИЙ

Этиология. Болезни эмбрионов сельскохозяйственной птицы специфичны и обусловлены следующими основными причинами: закладкой неполноценных яиц на инкубацию, что приводит к гибели зародыша от дистрофии (нарушение питания);

нарушением режима инкубирования яиц, что может повлечь за собой гибель всех партий эмбрионов на различных стадиях развития;

заражением эмбрионов возбудителями инфекционных заболеваний, которые передает потомству взрослая птица. Передача возбудителя через яйцо получила название трансовариальных инфекций (транс — через, овум — яйцо);

родственным разведением птицы (инбридинг), что приводит как к гибели эмбрионов, так и к их уродствам (генетические аномалии).

Классификация. Причины, вызывающие нарушения эмбриогенеза, указаны на рисунке 14.

Диагностика. В основе диагностики лежит биологический контроль, который складывается из следующих этапов: оценивают качество яиц до инкубации, контролируют развитие зародышей (прижизненный контроль), наблюдают за потерей массы яиц во время инкубации, учитывают продолжительность инкубационного периода, анализируют динамику смертности зародышей по периодам инкубации, исследуют патологоанатомическим методом погибших зародышей, оценивают качество выведенного молодняка, контролируют сохранность цыплят в первые дни выращивания, учитывают результаты инкубации по каждой партии, каждому инкубатору, птичнику, хозяйству.

Контроль за качеством яиц. Перед закладкой яиц на инкубацию в лаборатории проверяют их качество. Для этого от каждой партии отбирают яйца методом случайной выборки и с помощью

Рис. 14. Классификация причин, вызывающих нарушения эмбриогенеза


 

морфологического и биохимического анализов проверяют их качество. Ниже указаны признаки, свидетельствующие о том, что к инкубации яйца непригодны.

 

 

 

Показатель

Размер яйца Форма яйца

Скорлупа:

внешний виц

структура

цвет

химический состав

Желток:

положение в яйце и внешний вид

цвет

Состояние зародышевого диска (химический состав) Белок:

внешний вид

цвет

химический состав

Воздушная камера (положение и внешний вид)

Аномалии инкубационных яиц

Нарушения

Мелкое, крупное

Круглая, удлиненная, веретенообразная, конусовидная, эллипсовидная, сплюснутая

С трещинами, наростами; измятая, грязная Утолщенная, мраморная, с насечками Депигментированная, цвет, отличный от нормального Отсутствие или недостаток макро- или микроэлементов

Подвижный, свободно перемещается, прикреплен к подскорлупным оболочкам; двух- и трехжелтковые яйца, желток отсутствует, с нарушенной оболочкой Бледно-желтый, темно-желтый, наличие кровяных пятен, пятнистый

Недостаток витаминов, аминокислот, избыток витаминов, аминокислот

Разжиженный, пятнистый, помутневший; отсутствие градинок

Зеленый, кровянистый

Недостаток витамина В2, избыток токсических веществ, наличие вирусов, бактерий, грибов и их токсинов

Увеличенная, неправильно расположенная, с плесенью

 

 

 

Контроль за развитием зародыша. С этой целью просматривают на овоскопе три—шесть лотков от партии (в одной камере инкубатора), расположенных в разных зонах камеры и помеченных «контрольный». Просматривают три раза (табл. 42).

42. Сроки контрольных просмотров яиц на овоскопе

Вид птицы

 

Овоскопия, сутки инкубации

 

первая

вторая

третья

Куры:

яичные

6,5

10,5

18

мясные

7

11

18,5

Индейки

8...8,5

13-13,5

24,5-25

Утки

7,5...8

12,5-13

24,5-25

Цесарки

8,5-9

13,5-14

24,5-25

Гуси

9-9,5

14,5-15

27,5-28


 


 

При первом просмотре определяют интенсивность развития зародыша по состоянию желточного мешка и его сосудистой сети и выявляют яйца неоплодотворенные и с погибшими эмбрионами. В норме зародыш погружен в желток, малозаметён, кровеносная система желточного мешка хорошо развита. Отстающий в развитии зародыш хорошо виден, так как расположен близко к скорлупе, кровеносная система развита слабо. Ко времени второго просмотра (11 и 11,5 сут) аллантоис должен быть замкнут в остром конце яйца и покрывать все содержимое. Во время третьего просмотра в норме яйцо не должно просвечиваться в остром конце. Воздушная камера занимает примерно 1/3 яйца, иногда ее граница извилиста и подвижна из-за выпячивания шеи зародыша.

Нормальное развитие эмбриона можно контролировать по результатам вывода (табл. 43).

43. Сроки наклева и вывода молодняка

Вид птицы

Начало наклева

Начало вывода

Массовый вывод

Конец вывода

Куры:

яичные

19/8

19/18

20/6

21/0

мясные

19/2

20/0

20/12

21/6

Утки, индейки

25/8

26/12

27/0

27/12

Гуси

27/12

28/0

29/0

30/12

Примечание. В числителе указаны сутки, в знаменателе — часы инкубации.

 

Длительность эмбрионального развития мускусной утки

.35 дней, цесарки 26...29, фазана 24, голубя 16. При хорошем выводе количество погибших эмбрионов небольшое (табл. 44).

44. Классификация отходов инкубации

Вил

птицы

Количество неоплодотворенных яиц и эмбрионов, погибших в первые 48 ч инкубации, %

Кровяное

кольцо

Замершие

эмбрионы

Задохлики

Количе

ство

слабых,

калек,

%

день

инку

бации

количество, %

день

инкуба

ции

количество, %

день

инкуба

ции

коли

чество,

%

Куры

7...10

3...7

5...10

8...18

2...3

19...21

4...5

2

Утки

10...15

3...8

1,5...2

9...24

3...4

25...28

4...5

3

Индейки 10..15

3...8

0,5...4

9..24

2...3

25...28

4...5

3

Гуси

15...20

3...9

2...3

10...27

2...3

28...30 4,5...5,5

2

Цесарки 15

3...9

2...3

9...25

2...3

26...28

5...5,5

3

 

Патологоанатомический контроль и лабораторные исследования.

Чтобы получить достоверные данные о причинах гибели эмбрионов, для вскрытия необходимо отобрать определенное число яиц на различных стадиях инкубации (табл. 45).

45. Количественные показатели для патологоанатомического вскрытия отходов инкубации н выведенного молодняка

Отходы инкубации

Число инкубационных яиц для анализа

Показатели

Неоплодотворенные яйца

15...20

Распределение по категориям «ложный» и «истинный» неоплод

Кровяное кольцо

10...15

Малое и большое кровяное кольцо, характеристика погибших эмбрионов

Замершие

20...30

Определение полноценности инкубируемых яиц

Задохлики

30...40

Характеризуют режим инкубирования

Слабые, калеки

40...50

Характеризуют пригодность молодняка к выращиванию

Погибшие в разном возрасте эмбрионы

О

Г")

О

ГМ

Для исключения инфекций в ветеринарно-диагностической лаборатории

 

По данным кафедры птицеводства и болезней птиц МГАВМиБ, причиной гибели эмбрионов в 60...70 % случаев служит закладка на инкубирование неполноценных яиц. Наиболее характерные признаки неполноценных яиц при нарушении кормления родительского стада указаны в таблице 46.

Инфекционные болезни эмбрионов. Возбудители инфекций могут передаваться с инкубационным яйцом при его формировании (табл. 47). Различают эндогенный путь передачи инфекции, когда возбудитель находится внутри яйца, и экзогенный, когда он локализуется на поверхности скорлупы.

Эмбрионы могут заболеть и погибнуть на любой стадии развития. Однако не во всех случаях проникшие возбудители вызывают специфическое заболевание. Например, бациллы туберкулеза, контаминировавшие яйцо, могут сохраняться в виде скрытой инфекции. Болезнь разовьется лишь в постэмбриональный период. Поэтому по клиническим и патологоанатомическим признакам нельзя установить точный диагноз. Необходим бактериологический и вирусологический анализ.

Для исследования берут куриные эмбрионы, погибшие на различных стадиях инкубации, и изучают яйца с «кровяным кольцом», «замершие» (эмбрионы, погибшие с 7-го по 18-й день), «задохлики» (эмбрионы, погибшие во время вывода). Исследуют только свежий материал.


Подпись: 14046. Зависимость между клиническим проявлением эмбриональных дистрофий и нарушением кормления кур-несушек

Вил нарушения

Срок гибели эмбрионов, сут

Неопло-

дотво-

ренные

яйца

Слабая

окраска

желтка

Избыточное

отложение

уратов

Отставание эмбриона в росте и развитии

Запоздалое втягивание желтка в брюшную полость

Недостаточное использование белка и желтка

Недоразвитие нижней челюсти, отечность, карликовость, уродство глаз

Недоразвитость пера, дистрофия, «липкость»

Гиповитаминоз:

 

 

 

 

 

 

 

 

А

...2

+

+

+

+

+

 

+

+

В

12...18

 

 

+

+

 

+

+

+

В2

8...10

 

 

 

+

 

 

+

 

В,2

16...18

 

 

 

+

 

+

+

+

С

...21

 

 

 

 

 

 

 

 

Е

1...6

+

 

 

+

+

 

+

 

Н

...21

 

 

 

+

 

 

+

 

Избыток про

10...21

 

+

+

+

 

 

 

+

теина

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Недостаток

...21

 

 

+

+

 

+

 

 

макро- и микро-

 

 

 

 

 

 

 

 

элементов

 

 

 

 

 

 

 

 

 


 


 

Продолжение

 

Попугаев

клюв

 

 

Микро-

миелия

Гиперемия и

Синдак

тилия

Помутне

Кровоизлия

 

 

Вид нарушения

Мисггрофия

Микседема

отечность верхней трети головы

ние хрусталика глаза

ние в тело и желточный мешок

Кутику-

лит

Запоздалый

вывод

 

 

 

 

Гиповитаминоз:

А

Подпись: +В

В2

в,2 с

Е

Подпись: +
+
н

Избыток протеина

Недостаток макро- и микроэлементов

 

 

 

Примечание. » — нарушение в определенный период инкубации; « » — отсутствие нарушения.


 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Путь передачи возбудителя

 

 

Сроки гибели эмбрионов

 

 

 

 

 

 

 

Признаки на вскрытии

 

 

Болезнь

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 



Подпись: ЭндогенныйПодпись: В начале ин¬кубации Во второй пе¬риод инкуба¬ции
В конце ин¬кубации
То же
В середине инкубации
То же
Подпись: ЭкзогенныйПодпись: В середине и конце инку¬бацииПодпись: Респираторный Эндогенный микоплазмозПодпись: В конце инкубации
В любой пе¬риод
То же
Подпись: Эндо- и экзо¬генный
То же
Пуллороз

Эшерихиоз

Паратиф

Туберкулез

Вирусный

гепатит

Инфекционный бронхит

Инфекционный энцефало-

Оспа

Орнитоз

Болезнь

Ньюкасла

«Попугаев клюв», артриты, воспаления воздухоносных мешков (спайки), пневмония Отложение уратов, перерождение печени, увеличение желчного пузыря, желток зеленого цвета

Мацерации плода и плодовых оболочек, эмбриональная жидкость грязно-черного цвета, некрозы кожи, участков внутренних органов

Отечность и кровоизлияния в аллантоис. Печень, сердце с очагами некроза. Кровоизлияния в сердце и кишечник. Увеличение желчного пузыря Неоплодотворенные яйца —

.80 %

Миоатрофия, очаги некроза в печени, кровоизлияния, густая аллантоисная жидкость

Карликовый эмбрион плотно свернут в остром конце яйца. Большая воздушная камера. Эмбрион, прилипший к под- скорлупным пленкам Карликовый эмбрион, скрученные конечности, воспаление суставов, помутнение хрусталика глаза, кровоизлияния в желточный мешок

На аллантоисной оболочке белые очаги некроза, разбросанные по всему полю Карликовый эмбрион, недоразвитые плодовые оболочки, кровоизлияния в аллантоис и амнион

Задержка роста, кровоизлияния на коже, гиперемия, некрозы сердца, печени, мозга

 

 

Из яиц с «кровяным кольцом» для посева в пробирки в МПБ и на МПА (pH 7,2...7,4) берут желток и белок, у эмбрионов «замерших» и «задохликов» — печень, костный мозг, желточный мешок. Посевы выдерживают в термостате при 37 °С в течение 1...2сут, затем культуры пересевают в чашки Петри со средой Эндо. Культуры отбирают на основании особенностей роста на твердых средах и микроскопии мазков из отдельных колоний.


Морфологические, культурально-биохимические и серологические свойства выделенных бактериальных штаммов изучают по общепринятым методикам.

Вирулентные свойства выделенного возбудителя определяют методом искусственного заражения куриных эмбрионов. Для заражения берут смытую физиологическим раствором суточную агаровую культуру E. coli, S. pullorum, доводят ее до концентрации 0,1 (10 и 85 млн микробных тел в 1 мл по оптическому стандарту). Куриным эмбрионам 10... 12-дневного возраста культуру вводят в аллантоисную полость в дозе 0,1 (по 15 эмбрионов на один штамм, в том числе по пять на одну концентрацию микробных тел) и наблюдают за эмбрионами до вывода.

Нарушения правил транспортировки и хранения яиц перед закладкой в инкубатор. Срок хранения инкубационных яиц перед закладкой в инкубатор не должен превышать 4 дней.

Длительная транспортировка яиц без соблюдения условий, гарантирующих сохранение биофизического состояния коллоидной среды яйца, обусловливает следующие нарушения: смещаются слои плотного и жидкого белка, обрываются и ослабевают градинки, теряется эластичность подскорлупных оболочек. В результате желток с бластодиском всплывает к скорлупе, нарушается начальный процесс эмбриогенеза. Зародыш прилипает (присушка) к подскорлупным оболочкам. Отмечают массовую гибель в первые часы инкубации; увеличивается число кровяных колец. При обрыве градинок желток всплывает к воздушной камере, легко смещается.

Если яйцо подвергалось замораживанию и оттаиванию, гибнет бластодиск. Это нарушение можно определить, сварив несколько яиц.

Характерны изменения в контурах желтка, который теряет шарообразную форму; желточная оболочка разрушается или приобретает неправильную форму.

При длительном хранении даже в хороших условиях белок разжижается, вода из него перемещается в желток, форма желтка изменяется, а оболочка его разрывается. Вместе с этим меняется структура плотного слоя белка, что обусловливает большую подвижность желтка, который всплывает ближе к поверхности под- скорлупной оболочки.

Одним из диагностических признаков гибели эмбрионов при инкубации длительно хранившихся на яйцескладе яиц служит аморфоз (зародыш в виде бесформенного комка темно-серого цвета располагается на внутренней поверхности подскорлупной оболочки). Нередко обнаруживают следы крови.

При старении яйцеклетки бластодерма разрыхляется, увеличиваются межклеточные промежутки и гранулы желтка проникают между клетками. Отмечают различные аномалии в формировании зародышевых листков, усиливается рост внезародышевой части бластодермы в ущерб образованию зародышевых тканей. При хранении яиц свыше 20 дней обнаруживают следующие диагностические признаки:

бластодермальный аморфоз: гибель зародыша в 1-е сутки инкубации — видны беспорядочные тяжи по желточной оболочке с группой пузырьков;

гибель в 1-е, 2-е сутки инкубации — в бластодиске отсутствует разделение на зоны либо наблюдают аномалии в образовании сосудистого поля.

Отклонения в режиме и н к у бац и и. Данные отклонения (перегрев и недогрев яиц, нарушения в режиме влажности и др.) также приводят к различным патологиям.

Перегрев яиц на различных стадиях инкубирования обусловливает различные изменения в развитии эмбрионов.

В первые дни инкубации даже кратковременное воздействие повышенной температуры (39,5 °С и выше) влечет за собой гибель эмбрионов. Наблюдают также большое количество кровяных колец. Нарушается развитие внезародышевой сосудистой сети, разрываются кровеносные сосуды, что сопровождается кровоизлиянием. Эмбрионы присыхают к подскорлупной оболочке и имеют вид темно-коричневого бесформенного комка. Некоторая часть эмбрионов продолжает развиваться с выраженными признаками различных уродств. Наиболее часто при перегреве на ранних стадиях эмбриогенеза встречаются уродства головы: незарастание или недоразвитие черепа, вследствие чего образуется мозговая грыжа; одностороннее или двустороннее недоразвитие глаз — анизофтальмия. В глазных орбитах может полностью отсутствовать зрачок глаза. Односторонняя слепота сопровождается укорочением лицевого черепа; на той стороне, где отсутствует глаз, верхняя часть клюва перекручена, недоразвита или полностью отсутствует. Иногда выводятся цыплята с одним глазом (циклопы). Встречаются также уродства в виде различных удвоений: два верхних клюва, лишние конечности и т. п.

Перегрев с 3-х по 6-е сутки инкубации нарушает развитие амниона и образование брюшной полости. Последняя остается открытой, а внутренние органы (желток, кишечник, печень) — обнаженными. Такое уродство называют эктопией (выпадение внутренних органов). Многие эмбрионы погибают с признаками кровоизлияний. Молодняк выводится раньше срока.

Перегрев в середине инкубации вызывает гиперемию зародышевых оболочек и эмбрионов. У мертвых эмбрионов наблюдают кровоизлияния под кожей и во внутренних органах. Жидкость амниона кровянистая. Отмечают кровоизлияния и в аллантоисе.

Перегрев в последние дни инкубации сопровождается преждевременным наклевом и выводом. Цыплята мелкие, с плохо зажившей пуповиной. На вскрытии у большинства эмбрионов обна

 

руживают признаки удушья, желток не втянут в брюшную полость, сосуды желточного мешка наполнены кровью. Сердце небольшого размера, гиперемировано. Печень, желудок, кишечник недоразвиты. В коже, мозговых оболочках — кровоизлияния различных размеров.

Даже незначительный перегрев яиц на протяжении длительного периода вызывает глубокие нарушения в эмбриональном развитии, которые внешне не всегда можно распознать. При вскрытии яиц видно, что печень неравномерно окрашена, почки гипереми- рованы. Сосудистая сеть почек наполнена кровью, почечные тельца гиперемированы. При гистологическом исследовании обнаруживают эпителий мочевых канальцев в состоянии дегенерации. Заметна ускоренная инволюция первичной почки. Формирование постоянной почки запаздывает. Глубокие нарушения в почках затрудняют выведение конечных продуктов азотистого обмена. Аллантоис слишком рано атрофируется. Эмбрион преждевременно переходит к легочному дыханию, хотя морфологическая и физиологическая зрелость легких еще недостаточна. Эмбрион проклевывает скорлупу, но вывод затруднен. Часть цыплят выклевывается. Молодняк мелкий, со слабораспушенным перьевым покровом. На внутренней поверхности скорлупы обнаруживают остатки неиспользованного белка.

Недогрев яиц на ранних стадиях инкубации влечет за собой задержку в росте эмбрионов. Внезародышевая (желточная) сосудистая сеть отстает в развитии. На 3-и...5-е сутки инкубации наблюдают недоразвитие нервной трубки, поэтому нарушаются диффе- ренцировка мозговых пузырей и рост эмбриона в длину. Смертность при недогреве в первые дни инкубации незначительная; эмбрионы могут дальше развиваться, но в результате нарушения обмена веществ возникает ряд аномалий. При вторичном просмотре яиц видно, что аллантоис не смыкается на остром конце яйца. Иногда он остается незамкнутым до конца инкубации. Зародыш не полностью использует белок и желток. Наблюдают признаки застоя вследствие недостаточной функции сердечно-сосудистой системы. Сердце увеличено в объеме, что обусловлено потребностью в усиленной циркуляции крови для обогревания тела эмбриона.

При недогреве яиц во второй половине инкубации наклев и вывод цыплят недружные, запаздывают на несколько суток. Выведенный молодняк слабый. Плохо удерживается на конечностях, чаще в сидячем положении, нередко у них отмечают профузный понос. На внутренней поверхности скорлупы видны остатки неподсохшего аллантоиса. Под конец вывода остается много яиц с наклевом. Зародышевые оболочки недоразвиты. Кожный покров отечный, особенно это выражено в области головы и нижней челюсти. Желток темно-зеленого цвета, обычно втянут в брюшную полость. Толстый кишечник растянут, просвет его заполнен тем-

Б. Ф. Бессарабов и др.

но-зеленой массой. При вскрытии яиц обнаруживают, что большая часть цыплят жива, но они не могут проклюнуть скорлупу.

Незначительный недогрев яиц во второй половине инкубации не вызывает резко выраженных нарушений в развитии эмбрионов, однако вывод в этих случаях также запаздывает, что особенно заметно при инкубации биологически неполноценных яиц.

Нарушение режима влажности также влечет за собой развитие патологии. При избыточной влажности в инкубаторе отстают в развитии зародышевые оболочки, особенно аллантоис, который на 11-е сутки инкубации куриных яиц не смыкается на остром конце яйца. В амниотической полости и аллантоисе в конце инкубации остается жидкость. При наклеве жидкость просачивается через надбитые части скорлупы, подсыхает и затрудняет вывод. Цыплята малоподвижные, липкие, плохо подсыхают, пух у них грязный, живот большой. При вскрытии яиц с погибшими эмбрионами обнаруживают, что аллантоис отечный, наполнен кровью. В кишечнике скапливается околоплодная жидкость, которая иногда заполняет просветы дыхательных путей. Повышенная влажность в инкубаторе способствует развитию плесневых грибов, особенно при инкубировании загрязненных яиц. При вскрытии обнаруживают так называемые тумаки.

При пониженной влажности отмечают ускоренную усушку яиц. Возрастает число эмбрионов, погибших на разных стадиях развития. В конце инкубации заметно увеличивается воздушная камера. Аллантоис усилено развивается и преждевременно смыкается; развитие зародыша ускоряется, появляются следующие патологические изменения во внутренних органах: небольшие кровоизлияния и пигментация верхушки сердца. Подскорлупные оболочки подсыхают и становятся более прочными, что затрудняет их проклев. Выведенный молодняк недоразвитый и мелкий.

Нарушение газообмена — еще одно отклонение в режиме инкубации, обусловливающее нарушение эмбрионального развития. Эмбрион может выдержать значительную концентрацию С02 в тот период, когда газообмен совершается через сосуды аллантоиса. В дальнейшем эмбрион становится очень чувствительным к недостатку кислорода, а также повышению концентрации С02. Особенно большую потребность в кислороде эмбрион ощущает в конце инкубации.

При вскрытии зародышей, погибших от кислородного голодания, обнаруживают следующие изменения: положение эмбриона неправильное; нередко голова повернута к острому концу яйца; аллантоис заполнен кровью. Наблюдают незначительные кровоизлияния в мозговые оболочки, сердце, печень и почки.

Важным диагностическим признаком при недостаточном газообмене служит низкая выводимость цыплят.

Неправильное поворачивание яиц обусловливает следующую патологию. Аллантоис не полностью охватывает белок, вследствие
чего питание эмбриона нарушается, он отстает в развитии. При выводе в скорлупе остается неиспользованный, загустевший белок, цыплята нежизнеспособны. Часто эмбрион гибнет до наклева, так как желточный мешок может втянуться в брюшную полость еще до начала вывода. При вскрытии видно, что положение цыпленка неправильное — голова повернута к острому концу яйца или расположена между конечностями.

Еще одна аномалия в положении эмбриона: к моменту вылуп- ления эмбрион занимает в яйце все внутреннее пространство, за исключением воздушной камеры. Голова его —в тупом конце яйца, она подогнута под правое крыло, так что клюв обращен к воздушной камере, хвостовая часть в остром конце яйца, конечности прижаты к животу. Белок к этому времени весь использован, желток втянут в брюшную полость, амнион и аллантоис атрофированы, а их жидкость резорбирована.

Отклонения в положении эмбрионов встречаются довольно часто, многие из них служат причиной гибели при выводе.

 

 

 

Подпись: Последствия Летальный исход
Вывод затруднен, часто заканчивается гибелью цыпленка
То же
Летальный исход То же
Полулегальный
исход
Отклонение в положении эмбриона при выводе

Голова находится между бедрами и обращена к центру яйца

Цыпленок повернут на 180° головой к острому концу яйца, конечности обращены к воздушной камере

Голова цыпленка расположена в тупом конце яйца, но подвернута под левое крыло, так что клюв обращен в сторону воздушной камеры

Голова опущена вниз, в сторону от воздушной камеры

Голова — в тупом конце яйца, одна или обе конечности находятся на клюве

Голова лежит поверх крыла

 

 

 

Желточная ножка обернута вокруг шеи, желток не втянут Летальный исход

При вскрытии погибших эмбрионов заполняют протокол (табл. 48) и отмечают наиболее характерные патологоанатомические изменения.

Из приведенных данных патологоанатомического вскрытия отходов инкубации можно заключить, что для инкубирования было использовано неполноценное яйцо (тонкая скорлупа, неиспользованный белок, отставание в росте, отечность подкожно-жировой клетчатки и другие характерные изменения).

Общие ветеринарно-санитарные мероприятия в цехе инкубации. Цех инкубации должен находиться под постоянным ветеринарным контролем. Помещение инкубатория располагают изолиро-


 

 



ванно и на расстоянии не менее 2...3 км от других цехов хозяйства. Производственную зону, где размещен инкубаторий, огораживают, здесь же должен быть ветеринарно-санитарный пункт для дезинфекции машин и тары. При выезде из зоны оборудуют дезинфекционный барьер, чтобы предупредить механический разнос возбудителей инфекционных заболеваний.

В основном инфекции заносятся в инкубаторий с инкубационным яйцом. Поэтому на яйца, поступающие в инкубаторий, выдают ветеринарное свидетельство, подтверждающее благополучие по острозаразным болезням хозяйства-поставщика. Яйца, поступающие на инкубацию из цехов самого хозяйства, также должны сопровождаться справкой от ветеринарного врача о благополучии. Около дверей (окон), через которые подаются яйца в инкубаторий и выдаются цыплята, бетонируют или асфальтируют площадку (для транспорта) площадью 16...20 м.

Перед началом инкубации и по окончании ее инкубаторы, инвентарь и оборудование тщательно дезинфицируют. Помещение обрабатывают 10...20%-м раствором свежегашеной извести (побелка стен и потолка). Побелка стен инкубатория мелом без клееной основы нежелательна, так как приводит к запылению воздуха. Инкубаторы, лотки и прочий инвентарь после тщательной очистки дезинфицируют горячим 2...3%-м раствором формалина. Лотки после каждого вывода погружают в бак с подогретым дезраствором.

Шкафы и комнаты инкубаторов рекомендуют обрабатывать парами формальдегида: на пол инкубатора ставят эмалированную или стеклянную посуду, в которую наливают 40%-й раствор формалина из расчета 45 мл на 1 м3 инкубатора; высыпают 30 г перманганата калия, добавляют 200 мл воды и быстро закрывают дверь. Дезинфекция качественна только в том случае, если пары формальдегида образуются постепенно. При дезинфекции инкубаторов отверстия вентиляторов закрывают, включают вентиляцию и в течение 7...8 ч поддерживают температуру не ниже 30 °С, а влажность воздуха — до 80 %. После дезинфекции отверстия вентиляционной системы открывают, остатки паров формальдегида нейтрализуют 10%-м водным раствором нашатырного спирта.

Инкубаторий, яйцесклад, инкубаторы и инвентарь содержат в чистоте, помещение ежедневно убирают с помощью пылесосов. Перед входом в инкубаторий образуют дезбарьер. Кратность дезинфекции и ее качество контролирует ветеринарный врач.

В некоторых инкубаториях, как правило, инкубационный зал не изолирован от выводного, в результате чего из-за рециркуляции воздушных потоков создаются антисанитарные условия. В передовых хозяйствах широко применяют систему улавливания пыли фильтрами, зонтами, используют бактерицидные источники света. Более перспективно строительство инкубаториев с изолированными залами.

Сбор и транспортировка отходов могут привести к разносу инфекции, поэтому в передовых хозяйствах используют специальные пневматические установки, удаляющие отходы инкубации. Последние («кровяные кольца», «замершие», «задохлики»), а также павший молодняк и скорлупу перерабатывают в утильцехах или уничтожают путем сжигания в специальных печах. После термической обработки инкубационные отходы с разрешения ветеринарного врача можно использовать на корм скоту. Во многих птицеводческих хозяйствах их перерабатывают в белково-минеральную муку. Яйца, пораженные грибами, не подлежат переработке.

Перед закладкой яиц в инкубатор обязательно дезинфицируют скорлупу. Существует большое количество дезинфицирующих препаратов, которые применяют согласно наставлению, прилагаемому к дезинфектанту (дезмол, метацид, ВВ-1, АТМ, Озон и др.).

По своей природе дезсредства подразделяют на физические, химические и биологические. В зависимости от способа их применения различают дезинфекцию газовую, влажную и аэрозольную.

Физические способы. К ним относят термообработку, УФО, искусственную ионизацию воздуха.

Цель предынкубационной термообработки яиц — деконтами- низация их от вирусов лейкосаркоматозной группы и подавление вирулентности микоплазм. Однако из-за сильного прогрева выводимость яиц снижается на 3...5 %. За счет повышения сохранности поголовья при наличии в хозяйстве микоплазмоза и других кокковых инфекций достигается значительный экономический эффект.

Механизм действия ультрафиолетового облучения состоит в следующем: под влиянием лучистой энергии бактерии проходят три стадии изменений: стимуляцию, угнетение и отмирание. Патогенные микроорганизмы уже на ранних стадиях облучения теряют присущую им вирулентность и патогенность. Установлено, что ультрафиолетовое облучение куриных яиц повышает выводимость цыплят на 4...8 % (Б. Ф. Бессарабов и др., 1987).

Искусственная ионизация воздуха (аэроионизация) в инкубаторе отрицательными электрическими зарядами постоянного тока повышает концентрацию аэроионов до концентрации, характерной для инкубации в естественных условиях, т. е. под наседкой. Преимущества данного метода: не усложняется технология и не требуются трудовые затраты на обработку яиц аэроионами. Благодаря аэроионизации искусственная инкубация приближается к естественной.

Химические способы. Помещение инкубатория, находящееся в нем оборудование, а также яйца дезинфицируют с помощью газов (озон), жидких средств или аэрозолей.

Один из современных способов — дезинфекция яиц с помощью озона, который характеризуется сильным окислительным и обеззараживающим действием. Яйца в камере размещают неплотно, чтобы обеспечить более полный контакт газа с поверхностью яиц. С этой же целью рекомендуют периодически включать вентилятор.

Влажные методы наиболее распространены. Химическое средство взаимодействует с бактериальной клеткой в среде, которая может быть газообразной, жидкой, вязкой или плотной. Одно из существенных условий при обеззараживании — температура среды и ее концентрация. Для дезинфекции применяют едкий натр, формалин, пероксид водорода, хлорную известь, нейтральный гидрохлорид кальция, лизол, дезонол, монохлорид йода, кальцинированную соду, фрезот, препараты на основе надуксусной кислоты, полисепт, бромосепт-50, католит, анолит и другие средства согласно наставлению. Для борьбы с аспергиллезом гусят используют 5%-й водный раствор ДеМоса, используя для этого яйцемоечные машины.

В птицеводстве широко применяют аэрозольный метод дезинфекции. Аэрозоли — это твердые и жидкие частицы, находящиеся во взвешенном состоянии в воздухе. Они обеззараживают не только поверхность яиц, но и воздух помещения. При этом расход дезсредств в несколько раз меньше по сравнению с влажным методом обработки. Распыляют такие вещества, как формалин, гексахло- рофен, йодид алюминия, монохлорид йода, катионат Б-2, йодтри- этиленгликоль и другие препараты согласно наставлению. Для аэрозольной обработки необходима дезкамера, оснащенная специальным оборудованием (ОДК). Дезкамера должна быть герметична, снабжена надежной приточно-вытяжной вентиляцией, а также вентилятором, смешивающим воздух в камере, дозаторами дезинфицирующих средств, обогревателями, увлажнителями. Следует помнить, что все газообразные дезсредства вредны для людей.

Широкое распространение получили поверхностно-активные вещества, применяемые для дезинфекции инкубационного яйца, к которым относят АТФ, вирион, ВВ-1, бромосепт-50 и др. Преимущество этих препаратов очевидно. Например, ВВ-1 — это новое комплексное соединение органических компонентов, обладающее мощным бактериостатическим, бактерицидным и фунгицидным действием. Эффективность средства обеспечивается: широким спектром антибактериального влияния; пролонгирующим действием в течение всего периода инкубации;

сохранением и защитой естественного наружного лизоцимного барьера надскорлупной оболочки яйца;

созданием на поверхности скорлупы тонкой полимерной защитной оболочки, служащей дополнительным барьером на пути внутрияйцевой миграции спонтанной микрофлоры;

выраженным антистатическим влиянием на пылевые частицы и аэрогенную микрофлору, которые отторгаются от поверхности скорлупы;

снятием статических зарядов, образующихся в зародыше в процессе эмбриогенеза, особенно во второй период инкубации.

Препарат ВВ-1 распыляют в 0,25%-й концентрации крупнодисперсным методом. ВВ-1 очень экономичен: 25 г чистого препарата достаточно для обработки 35...45 тыс. яиц.

Работники цехов инкубации должны строго соблюдать требования санитарной гигиены. Для дезинфекции обуви перед входом в помещение расстилают дезинфекционный коврик. В инкубатории оборудуют бытовые помещения с душем, шкафами для личной спецодежды обслуживающего персонала, а также сосуды с растворами для дезинфекции рук. Бытовые помещения максимально изолируют от производственных.

Одна из важных мер, предусмотренная ветеринарным уставом, — межцикловые биопаузы или профилактические перерывы в инкубаториях. Продолжительность и число биопауз зависят от объема инкубации и эпизоотической ситуации в хозяйстве. В период профилактических перерывов дезинфицируют инкубаторий аэрозольным способом, подсобные помещения, все оборудование, инкубационные шкафы и инвентарь, а также обеззараживают в инкубатории воздух.

Стены, полы, потолки, вентиляционное оборудование тщательно моют теплой водой и после просушивания дезинфицируют. Для дезинфекции используют 1...3%-й водный раствор едкой щелочи, 20%-ю взвесь свежегашеной извести, 5%-й водный раствор кальцинированной соды, 1%-й раствор формальдегида. Через 2 ч после дезинфекции помещение проветривают. Важным мероприятием, направленным на снижение загрязненности инкубатория, служит ежедневная уборка рабочих столов, потолков, пола и т. д. с помощью губки, смоченной дезинфицирующим раствором, лучше 0,5%-м раствором хлорамина.

Периодически контролируют содержание в воздухе инкубатория микроорганизмов. Используют седиментационный (чашечный) способ их выделения или пропускают через бактерио- и вирусозадерживающие системы определенное количество воздуха с последующим высевом на питательные среды. После дезинфекции инкубаториев делают смывы с лотков и посевы на питательные среды. Ветеринарные специалисты многократно дезинфицируют птичники перед приемом молодняка на выращивание.

Чтобы снизить бактериальную обсемененность воздушного бассейна выводных шкафов, используют препарат хлоргексидина биглюконат, который растворяют в воде (5 мл основного раствора, 995 мл дистиллированной воды), распыляют с помощью САГ-1 из расчета 1,5 мл/м5 воздуха; экспозиция 20 мин. На выводе и для обработки цыплят перед отправкой на выращивание применяют 2%-й водный раствор котапола, 0,5%-й раствор виркона С из расчета 5 мл/м3 воздушного бассейна. Установлено, что воздух значительно очищается от микроорганизмов, если вентиляционная система снабжена фильтрами.

Контролю за качеством дезинфекции в цехе инкубации придается первостепенное значение. Для бактериологических исследований пробы берут из углов помещений и инкубаторов, а также с внутренних и внешних сторон лотков. Для этого вырезают квадраты-трафареты 1 дм2 (четыре квадрата) из пластмассы или другого материала размером 5x5 см, протирают в течение 30...40с стерильным тампоном, смоченным стерильным физиологическим раствором (масса сухого ватного тампона 0,05...0,06 г). Для бактериологического контроля качества дезинфекции яиц необходимо брать смывы со скорлупы 5... 10 яиц, расположенных на разных участках камеры-тележки. Отсутствие во взятых пробах культуры кишечной палочки указывает на хорошее качество дезинфекции.

ЗАДАНИЯ

Освоить методы, с помощью которых определяют полноценность яиц (взвешивание, овоскопия и др.). Проанализировать результаты лабораторной экспертизы на пригодность яиц к инкубации (с учетом требований ОСТ).

Определить внутреннюю структуру яиц (качество белка, желтка, скорлупы).

Методом овоскопии определить стадию развития эмбрионов, зарисовать особенности эмбриона.

Определить массу эмбрионов, плодовых оболочек, белка, желтка и скорлупы с учетом сроков развития.

Вскрыть отходы инкубации с различным сроком развития эмбрионов (неоплодотворенные, «кровяное кольцо», «замершие», «задохлики»).

Составить протокол патологоанатомических изменений по исследуемой партии отходов, отметить характерные признаки у погибших эмбрионов, зарисовать или сфотографировать наиболее интересные патологоанатомические изменения.

Определить процент вывода цыплят с учетом данных по закладке яиц на инкубацию и выбраковке отходов.

Подтвердить или исключить в качестве причины гибели эмбрионов инфекционное заболевание. Приготовить мазки-отпечатки из патматериала, окрасить их по методу Романовского—Гимзы и исследовать под микроскопом.

В инкубатории или в лабораторном шкафу инкубатора на кафедре освоить правила выемки и научиться оценивать молодняк.

Взвесить 10... 15 цыплят с точностью до 0,1 г, определить кондиционность молодняка и пригодность к выращиванию.


Вскрыть погибший суточный молодняк и определить развитие внутренних органов, состояние остаточного желтка, печени, мышечного желудка; полученные данные записать в журнал.

При посещении птицехозяйства изучить методы дезинфекции инкубационных яиц, а также рассчитать данные годовой потребности в дезинфектантах с учетом числа инкубационных яиц.

Чтобы проконтролировать качество дезинфекции яиц, взять смыв с поверхности скорлупы продезинфицированных яиц для последующего бактериологического исследования.

Освоить методы обработки цыплят после вывода дезинфектантами и лекарственными препаратами.

Контрольные вопросы

Каковы основные ветеринарно-санитарные требования, предъявляемые к процессу инкубации яиц?

Какие способы дезинфекции инкубационных яиц применяют на птицефабриках и птицеводческих объединениях?

Какие заболевания передаются у птиц вертикальным путем?

Что такое экзогенное и эндогенное инфицирование яиц?

Какими инфекционными заболеваниями могут заразиться цыплята при выводе?

Как утилизировать отходы инкубации?

Зачем нужно обрабатывать цыплят?

Какие меры предосторожности следует применять при сортировке цыплят, чтобы не произошло перезаражение?

 



загрузка...