Тема 12 СОСТАВЛЕНИЕ ПРОГРАММ ВАКЦИНАЦИЙ ПРОТИВ ИНФЕКЦИОННЫХ БОЛЕЗНЕЙ И КОНТРОЛЬ ЗА РАЗВИТИЕМ ИММУНИТЕТА

Тема 12 СОСТАВЛЕНИЕ ПРОГРАММ ВАКЦИНАЦИЙ ПРОТИВ ИНФЕКЦИОННЫХ БОЛЕЗНЕЙ И КОНТРОЛЬ ЗА РАЗВИТИЕМ ИММУНИТЕТА

Цель затггия. Ознакомиться с факторами, влияющими на эффективность вакцинаций, с различными программами профилактических вакцинаций против вирусных болезней и контролем за напряженностью иммунитета.

Материалы и оборудование. Птица разного возраста;

спирт, пробирки, инъекционные иглы, фотометр, набор для серологической диагностики ньюкаслской болезни методом иммуноферментного анализа, многоканальные пипетки, градуированные пипетки на 1...10мл.

Примерный план занятия. Контрольные вопросы.

Объяснение преподавателя.

Демонстрация: а) набора для ИФА; б) фотометра; в) готовых результатов исследования по РТГА и ИФА.

Самостоятельная работа студентов: отработка методов взятия проб крови у птицы разного возраста.

Подведение итогов занятия.

Задание к следующему занятию.

СОДЕРЖАНИЕ ЗАНЯТИЯ

Факторы, влияющие на эффективность вакцинации. К причинам, уменьшающим эффективность вакцинации, относят следующие: высокий уровень материнских антител у цыплят (антитела взаимодействуют с антигенами живой вакцины, что снижает вырабатываемый иммунитет);

вакцины могут не содержать штаммы или серотипы микроорганизмов, необходимые для создания протективного иммунитета (это в первую очередь касается болезни Марека, инфекционного бронхита кур);

живые вакцины при неправильном хранении или применении могут инактивироваться;

при неравномерном распылении биопрепарата в птичнике некоторые птицы не получают вакцину;

если иммунизируют в течение инкубационного периода болезни, то, несмотря на правильное введение вакцины, птица заболевает, так как для выработки антител и достижения протективного уровня требуется определенное время;

если птица поражена вирозом, вызывающим иммуносупрессию, — инфекционной бурсальной болезнью, болезнью Марека, инфекционной анемией птиц, аденовирусной и реовирусной инфекциями;

если птица поражена микотоксикозом. Из пяти основных семейств микотоксинов иммуносупрессию вызывают три: афлаток- син, трихотецепы (главным образом токсин Т-2 и диацетоксис- цирпенол), охратоксины. Все указанные токсины отрицательно влияют на результаты вакцинации, или непосредственно воздействуя на иммунную систему, или ослабляя птиц, и мобилизуют их иммунную систему, делая ее менее восприимчивой к вакцинации;

если птица поражена бактериозом. Некоторые бактерии — микоплазмы, кишечная палочка, сальмонелла и т. д. — оказывают иммуносупрессивное действие разной степени;

если условия содержания птицы не соответствуют зоогигиени- ческим нормативам;

стрессы (стрессовое воздействие на птицу должно быть сведено до минимума: например, взвешивание, сортировка, введение различных добавок и т. д.).

Программа вакцинации. Учитывая вышеизложенное, необходимо разработать программу вакцинации. Не существует стандартной программы, годной для любого хозяйства. Каждая птицеферма, птицефабрика должны составлять собственную программу иммунизации, которая определяется следующими факторами:

типом производства (бройлерные цыплята; молодки, предназначенные для промышленного или племенного стада, легкие или тяжелые породы);

эпизоотической ситуацией в хозяйстве (возбудители каких болезней циркулируют в хозяйстве);

эпизоотической ситуацией зоны, в которой расположено хозяйство (по каким заболеваниям неблагополучна зона и какова потенциальная угроза);

качеством ветобслуживания в данном хозяйстве.

Программы вакцинаций птиц в разных хозяйствах приведены далее (табл. 18...23). Список сокращений, принятых в птицеводстве:

БГ—болезнь Гамборо; ИББ — инфекционная бурсальная болезнь; ИБК — инфекционный бронхит кур; БМ — болезнь Марека; БН — болезнь Ньюкасла; ИЛТ — инфекционный ларинготрахеит; ИЭ — инфекционный энцефаломиелит; Рео — реовирусная инфекция; ССЯ-76 — синдром снижения яйценоскости-76; ART — ринотрахеит.

18. Программа вакцинации ремонтных молодок для комплектования родительского стада птицефабрики «Элинар-бройлер»

Возраст птицы, дней	Болезнь	Препарат	Метод вакцинации
7	Рео	Вакцина против Рео из шт. 2177 (Intervet)	Подкожный
10 10	ИБК, БН ИББ	Живая лиофилизированная вакцина против ИБК (шт. МА-5) и БН (шт. Clon-30) (Intervet) Сухая живая вакцина против ИББ (шт. Д-78) (ТАД Lukert; Nobilis; Intervet)	Пероральный
40	ИБК, ИББ, БН	Сухая живая вакцина против ИБК (шт. МА-5; ИББ (шт. Д-78); БН (шт. Clon-30)	Спрей
42	Рео	Вакцина против Рео (шт. 1133) (Intervet)	Подкожный
49	Респираторный микоплазмоз	Живая аттенуированная вакцина против респираторного микоплаз- моза (шт. 6/85) (Intervet)	Спрей
63	ИБК, ИББ, БН	Сухая живая вакцина
77	БН, ИБК, ИББ, Рео	Комбинированная инактивированная вакцина Provak-4	Внутримышеч ный
77	илт	Сухая живая вакцина против ИЛТ	Интраокуляр ный
91	Вакцинация против ИЭ	Живая вакцина против ИЭ (Ft Dodge)	Пероральный
105	Респираторный микоплазмоз	Живая аттенуированная вакцина против респираторного микоплаз- моза (шт. 6/85) (Intervet)	Спрей
119	БН (шт. Clon-30), ИБК (шт. М41), ИББ (шт. D78), Рео (шт. 1733, 2408), ССЯ-76	Комбинированная инактивирован- Внутримышечная вакцина против БН, ИБК, Рео, ный ИББ, ССЯ-76; Provak-4

6 Б. Ф. Ьсссарабоо и др.

 

 

19. Программа вакцинации бройлеров на Калужской бройлерной птицефабрике

 

20. Программа вакцинации молодок бройлерного племенного стада в ГППЗ «Смена»

 

21. Программа профилактических вакцинаций яичных молодок родительского стада на ГППЗ «Свердловский»

 

Продолжение

 

22. Программа вакцинации и исследований родительского стада для бройлерных хозяйств, работающих с кроссом «Ск-Русь»

 

 

 

 

 

Возможные осложнения после вакцинации. В норме реакция на введение вакцины респираторным методом у бройлерных цыплят развивается приблизительно через четыре дня и продолжается около пяти дней. При ревакцинации реакция будет менее выраженной благодаря буферному эффекту, создаваемому антителами, выработанными в ответ на первую вакцинацию. Однако в зимний период, когда птичники закрыты, чтобы поддержать высокую температуру, воздухообмен уменьшается. Запыленность и повышенное содержание аммиака в воздухе вызывают более сильную ответную реакцию на вакцинацию, которая проявляется массовыми конъюнктивитами, истечениями из носа. При патологоанатомическом исследовании отмечают аэросаккулиты (воспаление воздухоносных мешков).

Метод введения вакцины существенно влияет на степень проявления вакцинной реакции. При методах спрей и энтеральном (с питьевой водой) отмечают неравномерный охват птиц вакцинацией, что приводит к пассажированию вирус-вакцины от птицы к птице, вызывая пролонгированную реакцию.

Живые вакцины также вводят при помощи двухигольного инъ- ектора в перепонку крыла, внутримышечно и подкожно. Степень иммунного ответа организма определяется реакцией тканей. Однако чрезмерная местная реакция может привести к повреждению тканей.

При иммунизации против болезни Марека живую вакцину инъецируют суточному цыпленку подкожно в области шеи. Неправильное введение вакцины может обусловить проблемы центральной нервной системы (перекручивание шеи) и даже вызвать смерть. При большой численности цыплят используют одну иглу, вследствие чего вакцина или растворитель могут загрязняться во время обработок, что повлечет за собой заражение цыплят. Рекомендуют одной иглой вакцинировать 100 цыплят, а затем ее менять.

Против оспы и инфекционного энцефаломиелита иммунизируют путем прокола перепонки крыла. В норме реакция на вакцину обычно проявляется в течение 10 дней. Загрязнение вакцины или аппликатора приводит к повреждению тканей — образуется
уплотнение с творожистой (казеозной) сердцевиной. Слабовыра- женная реакция может свидетельствовать о том, что у птицы до прививки был иммунитет, или о неправильно выполненной вакцинации. В связи с особым устройством инъектора вакцину легко потерять перед введением в перепонку крыла: это может произойти, если углубление аппликатора не до конца заполнено вакциной или вакцина осталась на перьях крыла.

Инактивированные вакцины вводят подкожно, чаще в области дорсальной части шеи. При этом методе возникают некоторые трудности. Во-первых, примерно 10 % стада не получает вакцину или получает меньше полной дозы. Часть вакцины остается на перьях при полном проколе кожной складки. На месте инъекции образуется гранулема, обусловливающая болезненность, атрофию и скручивание шеи.

Инактивированные вакцины инъецируют также внутримышечно в грудь, бедро, крыло. После введения вакцины в грудную мышцу у цыплят и индюшат возможны такие осложнения: образуются гранулемы плотной консистенции с последующим некрозом, атрофией грудной мышцы, замедляется скорость линьки, прекращается рост. После инъекции в область бедра может развиться хромота. Вакцина спускается вниз по мышцам конечности, концентрируется и провоцирует воспаление мышц и подкожной клетчатки выше скакательного сустава. Инъекция в мышцы крыла может повлечь за собой паралич крыла.

Учитывая часто встречающиеся осложнения при иммунизации, инактивированные вакцины рекомендуют инъецировать в вентральную часть хвоста, на медиальной поверхности, избегая кровеносных сосудов. Если на месте введения и разовьется реакция, то дискомфорт в этой области будет менее существенным и не будет влиять на развитие цыпленка.

В заключение важно отметить, что реакция на вакцину — необходимый элемент в патогенезе иммунитета. Проявляющаяся реакция указывает на признание агента болезни, а серологическая оценка — это дополнительный фактор выявления иммунного ответа на некоторые вакцины.

Отбор проб для серологических исследований. Пробы крови получают методом случайной выборки. Не следует делать разницы между больной и здоровой птицей, маленькой и большой и т.д. Важно также брать птиц из разных мест птичника, тогда результаты исследований будут объективными.

При клеточном содержании птицы образцы крови следует брать по всему птичнику; от одной птицы из каждой выбранной клетки. Пробы крови отбирают индивидуально:

от цыплят в возрасте не менее 10 дней: а) путем декапитации (этот метод прост и позволяет получить достаточное количество крови); б) пункцией из сердца;

от более старших цыплят и взрослых кур: пункцией — разрезают скальпелем или инъекционной иглой подкрыльцевую вену после убоя.

При отборе проб крови нужно придерживаться следующих правил:

обрабатывать 2...3 мл крови, чтобы получить 0,5...0,75 мл сыворотки крови после коагуляции;

хранить и транспортировать образцы в одноразовых чистых и запечатанных пластиковых пробирках;

использовать одноразовые иглы и шприцы; ясно идентифицировать образцы (хозяйство, стадо, возраст птицы, кросс); для удобства каждую партию сывороток следует хранить в отдельном пластиковом пакете;

при использовании сухих пробирок отделять сыворотку от эритроцитов с помощью центрифугирования или естественной коагуляцией (1...2ч при горизонтальном положении пробирки);

хранить сыворотку: а) меньше 48 ч при температуре 4...8 °С; больше 48 ч при температуре —20 °С, но только в центрифужных пробирках или микроплашках. При замораживании следует заполнять пробирку не более чем на 3/4 объема;

избегать повторного замораживания—оттаивания сывороток; исключить колебания температуры при хранении; использовать специальные контейнеры с замерзающей жидкостью при доставке образцов при температуре 4...8 °С (сыворотка при этом должна оставаться незамороженной);

разводить сыворотку подходящим разбавителем, поддерживающим ее стабильность;

пробы в пробирки с антикоагулянтом брать осторожно: нужно несколько раз аккуратно перевернуть пробирку.

Основные серологические методы. В основе всех серологических тестов лежит реакция антиген—антитело. При этом не только выявляют эту реакцию, но и определяют в сыворотке содержание антител (титр).

Реакция агглютинации (РА). Агглютинирующие тесты используют для выявления антибактериальных антител (рис. 8).

Корпускулярный антиген (производитель диагностикума поставляет его в форме полной бактерии или антигена, связанного с нейтральными частицами) и проверяемую сыворотку смешивают в пробирке, стеклянной посуде или микролунках пластиковой плашки.

Появление агглютинации указывает на присутствие в сыворотке антител, которые связались с антигеном и агглютинировали частицы бактерий. Если суспензия остается совершенно однородной, то реакцию считают отрицательной: в сыворотках нет антител, которые могли бы агглютинировать частицы.

Этот тест прост, и для его постановки не требуется очень сложное оборудование. Более того, с его помощью выявляют антитела

Антигены

Сыворотка

антитела

 

Рис. 8. Упрошенная схема реакции агглютинации в пробирке

в очень ранний период, преимущественно ^М, которые вырабатываются первыми. С другой стороны, специфичность и чувствительность реакции агглютинации низкие: эти показатели в РА меньше, чем в других тестах. Методом РА на предметном стекле быстро определяют микоплазмы и сальмонеллы.

Реакция преципитации (РП). Принцип данной реакции, известной также как иммунодиффузия, очень сходен с принципом РА. Проверяемые субстанции диффундируют в агаре в чашках Петри, и признаком, указывающим на то, что антитела вступили в контакт с антигеном, служит линия преципитации (рис. 9).

Антиген помещают в центральную лунку, сделанную в толще агара, а тестируемые сыворотки — в лунки, расположенные вокруг центральной. Чашки Петри инкубируют в течение

.28 ч при температуре 37 °С. Антитела и антиген диффундируют в агаре. Когда они начинают контактировать, образуется комплекс в форме дуг преципитации, которые указывают на наличие антител в сыворотке.

Данный тест используют при ряде болезней, таких как ИББ, ИБК, БМ, ларинготрахеит, грипп, ССЯ-76 и ге- мофилез.

Реакция торможения гемаагглю- тинации (РТГА). В основе метода ле-

Рис. 9. Упрощенная схема преципитации в агаре в чашках Петри:

сыворотки 5/, 34 и 55— положительные; сыворотки 52, 33 и 56 — отрицательные; Ді; — антиген преципитации

жит способность некоторых вирусов и бактерий агглютинировать эритроциты (гемагглютинация).

Антиген серийного изготовления вступает в контакт с тестируемой сывороткой и эритроцитами. Если сыворотка содержит антитела, которые соответствуют данному антигену, то последний окажется нейтрализованным и не будет агглютинировать эритроциты. Это и есть феномен задержки гемагглютинации. Однако если сыворотка не содержит антител, то антиген останется свободным и будет агглютинировать эритроциты. Степень ингибирования напрямую зависит от количества антител в сыворотке. Это количественный тест.

Сыворотки разводят с постоянной кратностью, чтобы определить последние разведения, в которых наблюдают ингибирование, и оценить уровень антител. В этом тесте количество антигена сохраняют постоянным (4 или 8 гемагглютинирующих единиц). Тест читают в том случае, когда контрольные эритроциты, помещенные в лунки без сывороток, осели.

Седиментация указывает на торможение агглютинации и является положительным результатом. Сыворотка содержит достаточно антител, чтобы блокировать агглютинацию, вызванную антигеном. Агглютинация эритроцитов на дне лунки, напротив, указывает на отрицательный результат. Сыворотка не содержит достаточного количества антител, которые ингибируют агглютинацию. Благодаря последовательным разведениям сывороток (обычно двукратным шагом) определяют уровень антител.

Результаты, представленные на рисунке 10, показывают следующие уровни антител.

Сыворотка 1: нет осадка — нет задержки гемагглютинации.

Сыворотка 2: 1/16 или 4 log2 — последнее торможение агглютинации в разбавлении 1/16.

Сыворотка 3: 1/32 или 5 log2.

Сыворотки 4 и 5: 1/512 или 9 log2.

Сыворотка 6: 1/32 или 5 log2.

Сыворотка 7: 1/2 или 1 log2.

Тест РТГА используют при ньюкаслской болезни, гриппе, инфекционном бронхите кур, ССЯ-76 и иногда при микоплазмозе.

Твердофазный иммуноферментный анализ (ИФА, ELISA). Метод EL1SA в его простой разновидности (непрямой метод ELISA) основан на том, что антитела сывороток связываются с антигеном, зафиксированным на дне микролунок (рис. 11). Антитела, связавшиеся с антигеном, сорбированным на дне, затем обнаруживают под действием меченных ферментом антител, полученных на сыворотку крови цыплят. Добавляют субстрат (хроматоген), который чувствителен к гидролизованному ферменту и изменяет цвет. Интенсивность окрашивания пропорциональна количеству связанных антител. Результат считают при помощи спектрофотометра (по оптической плотности). Результат выражают в титрах ELISA: с

 

 

Рис. 1

Титр антител в сыворотке определяют так же, как в РТГА, — по последнему эффективному разведению. Титруют последовательным разведением с шагом 2 или 5, либо сыворотку при фиксированном титре вируса, либо вирусную суспензию при фиксированном титре антител в сыворотке. Результаты выражают в зависимости от разновидности метода: индексом нейтрализации или степенью разведения сыворотки. На практике чаще используют последний показатель. Этот метод очень достоверен. К его недостаткам относят то, что необходимы лаборатория с обученным персоналом и большое количество биологических систем (обычно эмбрионов). Указанный тест дорогой, его используют в научных исследованиях, например, изучают вариантные штаммы ИБК и т. д. Специфичность теста, точная характеристика степени защиты, которую обеспечивает сыворотка, делают его референтным для серологического исследования при многих вирусных болезнях птиц. Разработаны референтные стандарты для серологического исследования при ряде болезней, включая ИББ.

Следует различать применение серологических тестов для диагностики и для мониторинга состояния здоровья птицы.

Диагностическая серология. Приступая к серологическим исследованиям с целью диагностики, нужно учитывать такие особенности:

титры антител в крови постоянно изменяются; выводы на основе анализа титров можно делать только в том случае, если известно, в каком направлении изменяются титры;

изменение титров антител определяют путем сравнения двух партий образцов сыворотки, взятых с интервалом З...4нед. Подъем титров свидетельствует о недавней опасности заражения, падение — об ее отсутствии.

Диагноз на основе серологических исследований считают установленным, если при сравнении парных сывороток наблюдают существенное увеличение титров.

Серология в мониторинге состояния здоровья птицы. С помощью серологических методов:

определяют уровень материнских антител; составляют схему вакцинации цыплят; оценивают эффективность программы вакцинации птицы; контролируют эффективность вакцинации (метод, штамм); определяют состояние иммунной системы птицы.

Титры могут варьировать в зависимости от вида птицы, типа вакцины, программы иммунизации и других факторов (табл. 24, 25).

25. Базовые данные для племенной птицы и несушек

 

ИБ	Живая инактиви	2000...4000	3...5	4000-15000
	рованная	8000... 17000	5...8
БГ	То же	2000... 6000	3...5
		7000...25000	5...8	2000...12000
БН	»	10000...25000	3...5
		2000...5000	5...8	5000-20000
Рео	»	2000...5000	3-5
		7000...20000	5-8	3000-15000
АКТ		2000...5000	3...5
		7000...20000	5-8	Нет данных

Средний титр для суточных цыплят

 

Порядок анализа предполагаемых причин неудачной вакцинации

Шаг  Контроль

 

 

 

Установите причину наблюдаемой патологии

Если диагноз указывает на то, что причиной служит патология, против которой вакцинировали птиц, сопоставьте дату вакцинации с инкубационным периодом

Если вышеуказанное подтверждается, проверьте, была

На основе клинико-эпизоотологического анализа, а также результатов серологического и патологоанатомического исследований установите диагноз

Возможно, инфекция начала развиваться до вакцинации или до формирования эффективной защиты

Поскольку в целом риск, которому подвергается стадо, мог измениться, проверьте соблюдение санитарных мероприятий и скорректируйте программу вакцинации (вакцинный штамм, способ применения, дату вакцинации)

Серологическим методом оцените иммунитет Выясните, каким методом вакцинировали, и

ли применена вакцина на самом деле и была ли соблюдена дозировка

Если вакцину действительно применяли с соблюдением дозировки, проверьте ее качество

Если качество вакцины хорошее, проверьте, не снизилась ли ее активность из-за условий применения, а также в каком состоянии оборудование и качественны ли применявшиеся материалы

Если вакцинация была проведена правильно, проверьте, насколько подходящей была программа

Если вакцинация проведена правильно и программа вакцинации подходящая, проверьте состояние здоровья птицы во время иммунизации проведите техническую экспертизу исполнителя. Подсчитайте использованные дозы вакцины путем сбора пустых флаконов и сопоставлением их числа с численностью птиц

Проверьте условия хранения вакцины до ее применения (не подвергалась ли вакцина воздействию температуры во время подготовки к вакцинации)

Уточните срок годности вакцины на всех флаконах (Примечание: вакцины нескольких серий могли быть использованы для одной вакцинации)

Проверьте качество воды (при пероральной вакцинации с питьевой водой), продолжительность выпаивания и количество потребленной воды (не содержала ли вода остаточный хлор в высокой концентрации и правильно ли были применены нейтрализаторы хлора: сухое обезжиренное молоко, тиосульфат натрия, СЕВАМУП) Проконтролируйте стерильность использованных разбавителей (при вакцинации в перепонку крыла и интраокулярном методе)

Уточните, не использовали ли дезинфектанты при мойке инвентаря или в составе питьевой воды Проверьте, правильно ли функционирует оборудование (шприцы, спрей-аппараты, пипетки)

Проверьте обоснованность выбора вакцинного штамма

Выясните, не было ли потенциальной несовместимости между вакцинами (например, против ньюкаслской болезни и инфекционного бронхита) и другими лечебными обработками Если неудачные результаты получаются после бу- стерной вакцинации, уточните, насколько хорошо была проведена первая вакцинация Проверьте расчет сроков вакцинации и информацию, которая обосновывает эти сроки

Выясните, не подвергалась ли птица лечебным обработкам во время вакцинации или незадолго до ее проведения

Уточните, известен ли иммунный статус суточных цыплят (ИББ) и какие вакцинации проводились в родительском стаде

Проверьте, не было ли потенциального инфицирования стада микроорганизмами, вызывающими хронические инфекции (например, микоплазмами)

Уточните, не был ли корм контаминирован микотоксинами и вводили ли добавки против них Выясните, не могли ли условия окружающей среды во время вакцинации вызвать сильный стресс

Проверьте возможность заболевания птицы хроническим или субклиническим кокцидиозом

ЗАДАНИЯ

Отработать методы взятия проб крови у птицы разного возраста с целью получения сыворотки крови.

Проанализировать результаты, полученные с помощью РТГА и ИФА, в ответ на проведенную вакцинацию против ньюкаслской болезни.

Контрольные вопросы

Какие факторы влияют на эффективность вакцинации?

Какие осложнения у птицы могут развиваться при вакцинации?

Какие серологические методы исследования применяют в птицеводстве?

Рис. 1. Топография внутренних органов у курицы:

 

/ — гортань; 2 — пищевод; 3 — трахея; 4 — грудной нерв; 5—зоб; 6—бронхи; 7—легкие; 8— сердце; 9 — печень; 10— железистый желудок; // — мышечный желудок; /2 — двенадцатиперстный отдел тонкой кишки; 13 — поджелудочная железа; 14 — тонкий кишечник; 15— толстый кишечник; 16— сфинктер; 17— клоака; 18— слепые отростки кишок; 19 — яйцевод; 20— яичник; 21 — желчный пузырь; 22— селезенка

Рис. 2. Патологоанатомические изменения при сальмонеллезе:

А — увеличение селезенки; Б — кровоизлияния в сердце (/) и печень (2) при острой форме

 

 

Рис. 3. Патологоанатомические изменения при эшерихиозе:

Л — фибринозный перикардит;

Б — некробиоз печени

 

 

Рис. 4. Клиническое проявление хронической формы пастереллеза — опухание бородок

Рис. 5. Патологоанатомические изменения при пастереллезе: миллиар- ные очаги некроза

Рис. 6. Инфекционный ларинготра- хеит (ИЛТ):

А — геморрагическое воспаление слизистой оболочки трахеи; Б — аномалии формирования скорлупы яиц

 

 

 

 

 

Рис. 7. Синдром снижения яичной продуктивности (ССЯ-76):

А — подагра; Б — аномалии формирования скорлупы яиц

 

Рис. 8. Клиническое проявление оспы У кур

Рис. 9. Ньюкаслская болезнь:

 

А — клиническое проявление (нервно-паралитическая форма); Б — патологоанатомические изменения (кровоизлияния в слизистую оболочку железистого желудка)

Рис. 10. Болезнь Марека:

А — окулярная форма; Б — паралитическая форма; В— воспаление бедренного нерва (справа)

 

Рис. 11. Инфекционный энцефаломиелит кур (ИЭК):

А — больной цыпленок; Б — иридоциклит у курицы

 

 

Рис. 12. Патологоанатомические изменения у кур при инфекционной бурсальной болезни (ИББ, болезнь Гамбо- ро) — некроз головки бедренной кости

Рис. 13. Стахиоботриотоксикоз: некротический дерматит

 

Рис. 14. Овариит при хроническом (слева) и остром (справа) микотоксикозе. В центре — норма

 

Рис. 15. Проба на токсичность корма. Вытяжка комбикорма введена в бородку (показано стрелкой)

Рис. 16. Гиповитаминоз А:

 

А — кератоконъюнктивит у ремонтного молодняка; Б — пустулезные наложения желто-белого цвета на слизистой оболочке пищевода

Рис. 17. Гиповитаминоз О: рахит у молодняка кур, искривление метатарзальных костей

Рис. 18. Гиповитаминоз Е:

 

А — симптомы поражения нервной системы у цыпленка; Б — энцефаломаляция и кровоизлияние в мозжечок — справа, слева — контроль

Рис. 19. Гиповитаминоз К: кровоизлияния в бедренные и грудные мышцы

 

Рис. 20. Гиповитаминоз В: паралич

 

Рис. 21. Гиповитаминоз В2: скрюченные пальцы

 

Рис. 22. Дефицит пантотеновой кислоты у цыплят:

А— дерматит кожи век и угла клюва; Б — язвенные воспаления кожи подошвы конечностей

 

Рис. 23. Дефицит никотинамида; нарушение формирования пера и слабость

 

Рис. 24. Дефицит биотина: аптериоз, дерматит век

 

Рис. 25. Перозис: воспаление суставов конечностей

 

Рис. 26. Клиническое проявление мочекислого диатеза (подагра) — слева; норма — справа

 

 

 

 

 

— парез и параличи при ИЭМ;

— эрозионная болезнь мышечного желудка (кутикулит при недостатке витаминов);

— недогрев во второй половине инкубирования;

— гиперемия и кровоизлияния в желточный мешок и эктопия в первой половине инкубации;

—депигментация скорлупы яиц при ИЭМ;

омфалит;

кровоизлияния в пуповину при перегреве на выводе;

кровоизлияния в желточный мешок во второй половине инкубирования;

— эмбриотоксикоз. Скорлупа яиц запачкана зеленым пометом выведенных цыплят;

— неправильное положение эмбриона. Желточная ножка вокруг конечностей;

— клестовый клюв и искривление конечностей при гиповитаминозе Э;

— нарушение влажностного режима. Подсыхание плодовых оболочек;

— эмбриональная дистрофия. Увеличение желчного пузыря, миоатрофия;

— кровоизлияния в аллантоис при перегреве;

— гипергидроз. Нарушение влажностного режима;

— висцеральная форма подагры. Отложение уратов в мочеточниках;

/7—эктопия (открытая брюшная полость);

18 — эмбрион, свернувшийся в клубок при ИБК;

пуллороз;

отложение уратов при подагре;

21 — гиповитаминоз В|2. Неиспользованный белок. Микромиелия;

кровоизлияние на теле эмбриона при вирусной инфекции;

кровоизлияния в железистый желудок при вирусной инфекции;

колисептицемия. Отложение фибрина на сердечной сорочке;

приборы для определения качества яйца;

гиповитаминоз А. Обесцвечивание желтка, отложение уратов, отставание в росте и развитии;

помутнение белка при ССЯ-76

 

Рис. 28. Кнемидокоптоз: чесотка конечностей